Borrelia + VIsE IgG ELISA

Istruzioni per l’Uso
Borrelia + VIsE IgG
ELISA
Saggio immunoenzimatico per la diagnostica in-vitro per la
determinazione qualitativa o quantitativa di anticorpi IgG contro Borrelia
burgdorferi in siero, plasma e CSF umani. Riconosce infezioni con tutte
e tre le sottospecie di B. burgdorferi (garinii, afzelii e sensu stricto).
RE57201
96
2-8°C
I B L
I N T E R N A T I O N A L
Flughafenstrasse 52a
D-22335 Hamburg, Germany
Phone: +49 (0)40-53 28 91-0
Fax: +49 (0)40-53 28 91-11
G M B H
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www.IBL-International.com
Borrelia + VIsE IgG ELISA (RE57201)
1.
ITALIANO
USO PREVISTO
Saggio Immunoenzimatico per la diagnostica in-vitro per la determinazione qualitativa o quantitativa di
anticorpi IgG contro Borrelia burgdorferi in siero, plasma e CSF umani. Riconosce infezioni con tutte e tre le
sottospecie di B. burgdorferi (garinii, afzelii e sensu stricto).
2.
SOMMARIO E SPIEGAZIONI
La Borrelia burgdorferi, un batterio delle spirochete, è l’agente eziologico della malattia di Lyme (Borreliosi),
una delle malattie trasmesse da zecche più diffuse in Europa e negli USA. La malattia di Lyme è una
malattia multi-sistemica con un ampio spettro di sintomi. Un sintomo tipico della fase acuta è l’eritema
cronico migrante (ECM) spesso accompagnato da sintomi simili a quelli di un’influenza. In uno stadio
avanzato della malattia possono manifestarsi artrite, cardite e altri disturbi neurologici e dermatologici. La
malattia di Lyme può essere curata con antibiotici in tutti gli stadi. Pertanto è di grande importanza una
diagnosi sicura e precisa, in grado di riconoscere lo stadio iniziale della malattia, in quanto è preferibile un
trattamento precoce.
Gli anticorpi IgM si formano generalmente circa tre settimane dopo l’infezione, gli anticorpi IgG dopo quattro
o sei settimane. La prima reazione immunitaria è diretta soprattutto contro il peptide della flagellina (41 kDa)
e la OspC (la superficie esterna della proteina C, 23 kDa) e si estende poi a un numero via via crescente di
proteine batteriche. Generalmente la fase acuta è caratterizzata da alti titoli di anticorpi IgM. Titoli elevati di
IgG con una concentrazione di IgM bassa o nulla si presentano quando la borreliosi è in via di guarigione
(grazie a una terapia o spontaneamente) o durante lo stadio cronico. L’esecuzione del Kit Borrelia IgG
ELISA è quindi rilevante soprattutto per la detezione di una borreliosi in pazienti i cui sieri siano risultati
negativi per titoli di14 kDa e OspC e per monitorare lo stato immunitario.
Il kit Borrelia IgG ELISA si serve dell’antigene ricombinante altamente specifico della Borrelia burgdorferi
VlsE e di una miscela di antigeni lisati crudi altamente specifici di Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. afzelii
e B. garinii. Il test rileva pertanto gli anticorpi IgG con sensibilità e specificità estremamente elevate.
3.
PRINCIPIO DEL TEST
Saggio enzimatico immunoassorbente su fase solida (ELISA) basato sul principio del “sandwich”. I pozzetti
sono adesi con antigene. Gli anticorpi specifici del campione si legano all’antigene che riveste i pozzetti e
vengono rivelati da un secondo anticorpo specifico per l’IgG umana coniugato ad un enzima (E-Ab). Dopo la
reazione col substrato l’intensità del colore sviluppatosi è proporzionale alla quantità di anticorpi specifici per
l’IgG rilevati. I risultati dei campioni possono essere determinati direttamente usando la curva standard o lo
standard Cut-off.
4.
AVVERTENZE E PRECAUZIONI
1. Solo per uso diagnostico in-vitro. Solo per uso professionale.
2. Leggere attentamente le istruzioni prima di iniziare il test. Utilizzare il manuale fornito nel kit. Assicurarsi
di aver compreso tutte le indicazioni.
3. In caso di danneggiamento del kit contattare IBL o il Vostro fornitore entro 1 settimana dal ricevimento
della merce. Non utilizzare i componenti danneggiati ma conservarli per fornire prove del danno assieme
al reclamo che inoltrerete al produttore/fornitore.
4. Rispettare lotto e scadenze. Non scambiare o mescolare tra loro reagenti di lotti diversi. Non usare i
reagenti scaduti.
5. Attenersi alle Buone Pratiche di Laboratorio e alle direttive di sicurezza. Indossare camici, guanti in
lattice e occhiali protettivi se necessario.
6. Alcuni reagenti del kit contengono sostanze pericolose che potrebbero causare irritazioni a pelle ed
occhi. Consultare la sezione MATERIALE FORNITO e le etichette per i dettagli precisi. Schede di
sicurezza del prodotto sono disponibili sul sito web IBL o su richiesta specifica ad IBL/fornitore.
7. I reagenti preparati e usati e le sostanze chimiche del kit devono essere trattati come rifiuti pericolosi
secondo le normative di sicurezza e la legislazione vigente nel Paese in cui il prodotto viene usato.
8. Il personale delle pulizie dev’essere informato dal personale specializzato sui possibili rischi e sulle
procedure da adottare.
9. Evitare il contatto con la soluzione stop. Può causare irritazioni e ustioni della pelle.
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10. Tutti i reagenti del kit contenenti siero umano o plasma sono risultati negativi rispetto a HIV I/II, HBsAg e
HCV. Si raccomanda tuttavia di trattarli come potenzialmente pericolosi poiché non si può escludere in
maniera assoluta la presenza di questi o di altri agenti infettivi.
5.
CONSERVAZIONE E STABILITÀ
Il kit è spedito e trasportato a temperatura ambiente e deve essere conservato a 2-8 °C. Non esporre a luce
solare diretta e ad alte temperature. L’informazioni relative a conservazione e stabilità di tutti i reagenti e dei
campioni sono riportate nel capitolo corrispondente.
La piastra microtitrata aperta è stabile fino a 3 mesi se conservata nel suo involucro ben chiuso riposta a
2-8 °C.
6.
PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI
Siero, Plasma (EDTA)
Osservare le classiche precauzioni durante il prelievo venoso. Conservare l’integrità del campione di
sangue dal momento del prelievo al momento dell’esecuzione del test. Non usare campioni emolizzati,
itterici o lipemici. I campioni torbidi devono essere centrifugati per rimuovere il materiale particolato al loro
interno.
Conservazione Siero/Plasma/CSF:
2-8 °C
Stabilità Siero/Plasma/CSF:
5 giorni
7.
12 mesi
Non esporre alla luce solare diretta e al calore.
Evitare la ripetizione di cicli di
congelamento/scongelamento.
MATERIALE FORNITO
Quantità
Simbolo
1 x 12 x 8
MTP
1 x 15 mL
ENZCONJ
1 x 4 x 1.5 mL
CAL A-D
1 x 1.5 mL
CONTROL +
1 x 1.5 mL
CONTROL -
1 x 100 mL
DILBUF
1 x 100 mL
WASHBUF CONC
1 x 15 mL
TMB SUBS
1 x 15 mL
TMB STOP
8.
≤ -20 °C
(Aliquote)
Componente
Micropiastra
Strisce separabili. Ricoperta con antigene specifico.
Coniugato Enzimatico
Pronto/a all’uso. Di colore verde. Contiene: antiumano IgG, coniugato a
perossidase.
Standard A–D
2; 10; 50; 200 U/mL
Standard B = Cut-off Standard
Pronto/a all’uso. Contiene: IgG anticorpi contro B. burgdorferi, stabilizzatori.
Controllo Positivo
Pronto/a all’uso. Contiene: IgG anticorpi contro B. burgdorferi, stabilizzatori.
Controllo Negativo
Pronto/a all’uso. Contiene: Siero umano, stabilizzatori.
Tampone Diluente
Pronto/a all’uso. Di colore blu.
Tampone Lavaggio, Concentrato (10x)
Contiene: tampone fosfato.
Soluzione Substrato TMB
Pronto/a all’uso. Contiene: TMB, Tampone, stabilizzatori.
Soluzione Stop TMB
Pronto/a all’uso. 1 M H2SO4.
MATERIALI NECESSARI MA NON FORNITI
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
Micropipette (Multipette Eppendorf o similari, < 3 % CV). Volumi: 5; 10; 100; 1000 µL (regolabile)
Vortex mixer
Provette (≥ 1 mL) per la diluizione dei campioni
Incubatore, 37 °C
Micropipetta 8-Canali con contenitori per reagenti
Spruzzetta per lavaggi, lavatore per micropiastre automatico o semi automatico
Lettore per micropiastre in grado di leggere ad assorbanza di 450 nm (lunghezza d’onda di riferimento
600-650 nm)
8. Acqua bidistillata o deionizzata
9. Carta assorbente, puntali per pipette e timer
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NOTE PER LA PROCEDURA
1. Qualsiasi manipolazione impropria dei campioni o modifica alla procedura può compromettere i risultati.
Rispettare rigorosamente i volumi, i tempi e le temperature di incubazione e i passaggi di pretrattamento
dei campioni indicati in metodica. Utilizzare pipette calibrate.
2. Una volta iniziato il test completare tutti i passaggi senza interruzioni. Assicurarsi che tutti i reagenti
siano stati precedentemente preparati in tempo utile. Far raggiungere la temperatura ambiente ai
campioni e ai componenti del kit (18-25 °C) e mescolare delicatamente ciascun reattivo liquido e
campione prima dell’uso. Non creare schiuma durante il mescolamento.
3. Evitare la contaminazione di reagenti, pipette, pozzetti o provette. Usare puntali di plastica nuovi per
ogni reagente, standard e campione. Non scambiare i tappi tra loro. Tappare sempre i flaconi non
utilizzati. Non riutilizzare pozzetti/provette o reagenti.
4. Si consiglia di saggiare i campioni in doppio per poter identificare eventuali errori di pipettamento.
5. Usare uno schema di pipettamento per realizzare un’appropriata distribuzione sulla piastra.
6. Il tempo di incubazione influisce sui risultati. Tutti i pozzetti dovrebbero essere dispensati nello stesso
ordine e sequenza temporale. Si raccomanda una pipetta multicanale a 8 canali per pipettare le
soluzioni in tutti i pozzetti.
7. Il lavaggio della micropiastra è importante. Pozzetti lavati in modo inappropriato possono portare a
risultati erronei. Si raccomanda una pipetta multicanale o un lavatore automatico per piastre. Non far
asciugare i pozzetti tra le varie incubazioni. Non graffiare i pozzetti rivestiti durante risciacqui e
aspirazioni. Risciacquare e versare i reagenti con cura. Durante i risciacqui assicurarsi che i pozzetti
siano ben riempiti con la soluzione di lavaggio e che non ci siano residui nei pozzetti.
8. L’umidità influisce sui pozzetti/tubi rivestiti. Non aprire l’involucro finché non ha raggiunto la temperatura
ambiente. Riporre immediatamente i tubi/pozzetti non utilizzati nell’involucro con il disseccante.
10.
ISTRUZIONI PRE-TEST
10.1. Preparazione di componenti concentrati
Diluire /
dissolvere
Componente
100 mL
WASHBUF
CONC
fino a
1000 mL
Diluente
Rapporto
Note
Conservazione
Stabilità
acqua
bidist.
1:10
Togliere i cristalli
a 18-25°C.
2-8 °C
2 mesi
10.2. Diluizione dei Campioni
10.2.1. Siero, Plasma
Campione
Siero, Plasma
da diluire
con
Rapporto
Note
sempre
DILBUF
1:101
p.e. 10 µL + 1 mL
Campioni con concentrazioni superiori allo standard più alto devono essere ulteriormente diluiti.
10.2.2. Siero/CSF
Per la diagnostica del liquido cerebrospinale (CSF) secondo Reiber è necessario usare concentrazioni simili
o indici Cut-off (COI) nell’intervallo DO da 1.0 a 0.1 per siero e CSF. Questo è possibile usando le diluizioni
seguenti:
Campione
Siero
CSF
da diluire
sempre
con
DILBUF
Rapporto
1:401
Note
p.e. 5 µL + 2 mL
sempre
DILBUF
1:4
50 µL + 150 µL
Gli indici Cut-off sono corretti con fattori di diluizione per ogni diluizione in rapporto alla diluizione 1:101:
L’indice Cut-off per la diluizione del siero 1:401 dev’essere moltiplicato per 4 e la diluizione di CSF 1:4
dev’essere diviso per 25.
Se i campioni testati non risultano compresi nell’intervallo da 1.0 a 0.1 DO è necessario eseguire una serie
di diluizioni. Si raccomandano le seguenti diluizioni:
Siero
1:100
1:200
1:400
1:800
1:1600
CSF
1:2
1:4
1:8
1:16
1:32
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PROCEDURA DEL TEST
Pipettare rispettivamente 100 µL di Standard, Controlli e campioni diluiti nei rispettivi pozzetti
della Micropiastra. Nel test qualitativo usare solo Standard B (Standard Cut-off).
Incubare per 1 h a 37 °C. Usare una pellicola adesiva o una camera con umidità controllata.
Rimuovere la pellicola adesiva. Eliminare la soluzione d’incubazione. Lavare la piastra 3 x con
300 µL di Tampone di Lavaggio diluito. Rimuovere l’eccesso di soluzione picchiettando la piastra
capovolta su una salvietta di carta.
Pipettare 100 µL di Coniugato Enzimatico in ogni pozzetto.
Incubare per 30 min a 37 °C. Usare una pellicola adesiva o una camera con umidità controllata.
Rimuovere la pellicola adesiva. Eliminare la soluzione d’incubazione. Lavare la piastra 3 x con
300 µL di Tampone di Lavaggio diluito. Rimuovere l’eccesso di soluzione picchiettando la piastra
capovolta su una salvietta di carta.
Per aggiungere le Soluzioni Substrato e Stop usare, possibilmente, una micropipetta 8-canali.
Pipettare con intervalli di tempo costanti per le Soluzioni Stop e Substrato. Usare uno spostamento
positivo ed evitare la formazione di bolle d’aria.
Pipettare 100 µL di Soluzione Substrato TMB in ogni pozzetto.
Incubare al buio per 30 min a TA (18-25 °C).
Fermare la reazione del substrato aggiungendo 100 µL of Soluzione Stop TMB in ogni pozzetto.
Mescolare delicatamente il contenuto agitando leggermente la piastra.
Misurare la densità ottica con un fotometro a 450 nm (lunghezza d’onda di riferimento: 600-650 nm)
entro 60 min dopo aver pipettato la Soluzione stop.
CONTROLLO DI QUALITA’
I risultati del test sono validi solo se il test è stato eseguito seguendo le istruzioni per l’uso. L’utente deve
inoltre attenersi rigorosamente ai principi della BPL (Buona Pratica di Laboratorio) o a norme equivalenti. Gli
utenti e il laboratorio devono avere un sistema di formulazione della diagnosi conforme alle Buone Pratiche
di Laboratorio. Tutti i controlli devono risultare compresi entro gli intervalli accettabili indicati sulle etichette e
il Certificato QC. Se i criteri non sono soddisfatti il test non è valido e dovrebbe essere ripetuto. Ogni
laboratorio dovrebbe usare campioni noti come ulteriori controlli. Si consiglia la partecipazione a programmi
di controllo qualità periodici.
In caso di deviazioni devono essere forniti i seguenti dati: Scadenza dei reagenti (preparati), condizioni di
conservazione, pipette, strumenti, condizioni d’incubazione e metodi di lavaggio.
13.
CALCOLO DEI RISULTATI
L’evaluazione del test può essere eseguita qualitativamente o quantitativamente.
13.1. Evaluazione Qualitativa
Il valore di Cut-off è fornito dalla densità ottica (DO) dello standard B (Standard Cut-off). L’indice Cut-off
(COI) è calcolato sulla base della densità ottica media dei campioni e del valore Cut-off. Campioni la cui
densità ottica non differisca più del 10% dal Cut-off (zona grigia) vanno considerati dubbi. Campioni con DO
superiore sono positivi, campioni con DO inferiori sono negativi.
Esempio Tipico:
Cut-off = DO (Standard B, Standard Cut-off) = 0.45
DO Campione = 0.60
Indice Cut-off (COI): 0.60 / 0.45 = 1.33. Il campione va considerato positivo.
13.2. Evaluazione Quantitativa
Rapppresentare le DO ottenute per gli standard (asse y, lineare) in relazione alla loro concentrazione (asse
x, logaritmico) su carta semilogaritmica o usando un metodo automatico. Buoni risulati si ottengono con I
programme cubic spline, Logistica 4 Parametri o Logit-Log.
Per il calcolo della curva standard usare tutti i segnali degli standard (in caso di determinazione doppia è
possible eliminare un segnale evidentemente troppo alto e usare il singolo segnale plausibile).
La concentrazione dei campioni si può leggere sulla curva standard.
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La diluizione iniziale consigliata in queste istruzioni è stata tenuta in considerazione per l’evaluazione
descritta sopra. I risultati dei campioni con prediluizioni superiori devono essere moltiplicati per il fattore di
diluizione.
I campioni con concentrazioni superiori al più alto degli standard possono essere diluiti come descritto nelle
ISTRUZIONI PRE-TEST e ritestati.
(OD)
2.500
Tipica Curva Standard
(Esempio. Non usare per il calcolo!)
Standard
U/mL
DO Media
A
2
0.008
B
10
0.267
C
50
1.097
D
200
2.114
Borrelia + VlsE IgG ELISA
2.000
1.500
1.000
0.500
0.000
1
14.
10
100
1000
(U/mL)
INTERPRETAZIONE DEI RISULTATI
Metodo
Quantitativo
(Curva Standard):
Qualitativo
(Indice Cut-off, COI):
Intervallo
> 11 U/mL
9 – 11 U/mL
< 9 U/mL
> 1.1
0.9 – 1.1
< 0.9
Interpretazione
positivo
dubbio
negativo
positivo
dubbio
negativo
I soli risultati non dovrebbero
essere l’unica motivazione alla
base di una scelta terapeutica.
Devono essere correlati ad
altre osservazioni cliniche e
test diagnostici.
In caso di risultati negativi di IgG e risultati negativi dell’ELISA Borrelia 14 kDa + OspC IgM, una borreliosi
acuta è improbabile. Comunque non si può escludere con certezza un’infezione recente se il campione è
stato prelevato entro tre settimane dall’infezione, poiché in questo periodo non sono stati prodotti anticorpi
specifici. Se il campione è positivo per l’IgM, il risultato indica una borreliosi acuta al primo stadio, che
richiede una terapia.
Risultati di IgG dubbi accompagnati da risultati dell’ELISA Borrelia 14 kDa + OspC IgM positivi o negativi,
possono manifestarsi in caso di infezioni secondarie o croniche, così come in caso di stimolazione da
anticorpi policlonali dovute ad altre infezioni. Una stimolazione policlonale può essere esclusa con un
Werstern Blot dei campioni, utilizzando Borreliae trattate con ultrasuoni. Risultati dubbi devono essere
confermati da un ulteriore controllo dopo 14 giorni. In caso di borreliosi i titoli di IgG rimangono quasi
costanti in questo breve periodo di tempo, mentre in caso di risposte immunologiche policlonali i titoli
generalmente diminuiscono durante questo periodo.
Valori positivi di IgG accompagnati da risultati positivi o dubbi dell’ELISA Borrelia 14 kDa + OspC IgM,
indicano un’infezione acuta persistente che richiede un trattamento. In particolare titoli molto alti di IgG
accompagnati da risultati di IgM negativi, sono tipici di una reazione non specifica causata da una
stimolazione policlonale. Queste reazioni diminuiscono entro due o tre settimane, come sopra, e quindi un
ulteriore campione dev’essere analizzato due o tre settimane dopo. Un campione positivo può anche essere
confermato tramite un Western Blot.
Il Kit Borrelia IgG ELISA dimostra elevata sensitività e specificità per la detezione di infezioni da
Borrelia burgdorferi per via dell’uso di antigeni VlsE di Borrelia burgdorferi ricombinanti associati ad una
miscela altamente specifica di antigeni di Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. afzelii e B. garinii. Questa
combinazione consente di riconoscere con elavata sensibilità e specificità stadi iniziali di un’infezione da
Borrelia e infezioni persistenti o croniche.
L’ELISA Borrelia IgG è anche adatto per ulteriori controlli di una terapia ben riuscita. In questo caso
bisogna considerare che fino a 2 – 4 mesi dopo che l’infezione è stata curata i titoli degli anticorpi non
diminuiscono significativamente.
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LIMITI DELLA PROCEDURA
La raccolta e conservazione dei campioni ha influenza significativa sui risultati del test. Vedere la sezione
PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI per maggiori dettagli.
Per le reazioni crociate vedere la sezione PERFORMANCE.
Azide e thimerosal a concentrazioni > 0.1 % interferiscono con questo test e possono portare a risultati non
veritieri.
I seguenti componenti del sangue non influenzano significativamente (+/-20% del valore atteso) I risultati del
test fino alle concentrazioni indicate di seguito:
Emoglobina
Bilirubina
Trigliceridi
16.
2.0 mg/mL
0.3 mg/mL
2.5 mg/mL
PERFORMANCE
Gruppo Pazienti
Specificità Analitica
(Reattività Crociate)
Precisione
Intra-Saggio
n = 24
Inter-Saggio
n = 20
Linearità
Specificità relat.:
Confronto del metodo
versus Immuno Blot
Sensibilità relat.:
Confronto del metodo
versus Immuno Blot
Confronto di analisi
Automazione
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Risultati negativi /
campioni esaminati
16/16
6/7
9/9
13/14
10/12
5/6
Sifilide (Treponema pallidum)
Fattore reumatoide positivo
CRP alto
CCP IgG positivo
Uric acid alto
ANA positivo
Intervallo COI / U/mL
CV (%)
< 1 / < 10
7
> 1 / > 10
4
0.6 / 7
5.3
1.7 / 17
4.3
4.4 / 64
5.9
6.9 / 170
8.8
Intervallo (DO)
Intervallo di diluizione seriale
Intervallo (%)
1.0 – 0.1
1:4 – 1:32
100 – 130
Borrelia afzelii IgG Blot
IBL-Assay
positivo
negativo
totale
positivo
14
5
0
negativo
0
279
279
Specificità relat. 98.3 %
total
14
284
298
Borrelia recombinant IgG Blot +
Borrelia afzelii IgG Blot
IBL-Assay
positivo
negativo
totale
positivo
32
4
36
negativo
2
20
22
Sensibilità relat. 94.1 %
totale
34
24
58*
Campioni
n
IBL-Assay
Saggio
Saggio
Concorrente 1 Concorrente 2
ECM
positivo
49 %
30 %
33 %
116
dubbio
0
3%
2%
Neuropositivo
74 %
68 %
58 %
38
borreliosi
dubbio
0
3%
0
Questo test è stato calibrato per, p.e., BEPIII (Dade Behring), TRITURUS (Grifols)
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Il kit ELISA per IgG specifici di Borrelia è stato eseguito su siero e CSF in 5
diluizioni appropriate: Siero 1:100-1:1600 e CSF 1:2-1:32. La coppie di siero e
CSF sono state prelevate lo stesso giorno e la determinazione è basata sul
programma di evaluazione per diagnosi del CSF del Prof. Reiber. Per
Determinazione del CSF
l’evaluazione sono state impiegate coppie di siero/CSF con IgG specifici
prodotti intratecalmente con e senza alterazioni della barriera ematoencefalica. Tutti i risultati dei test della IBL International sono risultati conformi
ai sintomi clinici e ai risultati dei test di referenza.
* campioni positivi nel saggio concorrente
17.
RIFERIMENTI BIBLIOGRAFICI SUL PRODOTTO
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15. Rupprecht, T. A., Koedel, U., Fingerle, V., Pfister, H-W., The Pathogenesis of Lyme neuroborreliosis:
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Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik. München: Urban & Fischer, 2000
(in Englisch via Internet unter DGHM.org oder NRZ-Borrelien.LMU.de).
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Vitro. / Dispositivo Médico para Diagnóstico In Vitro. / Equipamento Médico de Diagnóstico In
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Symbols of the kit components see MATERIALS SUPPLIED.
Die Symbole der Komponenten sind im Kapitel KOMPONENTEN DES KITS beschrieben.
Voir MATERIEL FOURNI pour les symbôles des composants du kit.
Símbolos de los componentes del juego de reactivos, vea MATERIALES SUMINISTRADOS.
Para símbolos dos componentes do kit ver MATERIAIS FORNECIDOS.
Per i simboli dei componenti del kit si veda COMPONENTI DEL KIT.
Για τα σύµβολα των συστατικών του κιτ συµβουλευτείτε το ΠΑΡΕΧΟΜΕΝΑ ΥΛΙΚΑ.
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